作者:百檢網 時間:2021-11-15 來源:互聯網
1 范圍
本標準規定了食品中維生素A、維生素E和維生素D的測定方法
本標準**法適用于食品中維生素A和維生素E的測定
本標準第二法適用于食用油、堅果、豆類和辣椒粉等食物中維生素E的測定。
本標準第三法適用于食品中維生素D2和維生素D的測定。
本標準第四法適用于配方食品中維生素D2或維生素D3的測定。
**法食品中維生素A和維生素E的測定反相高效液相色譜法
2 原理
試樣中的維生素A及維生素E經皂化(含淀粉先用淀粉酶酶解)、提取、凈化、濃縮后,C3。或PFP反相液相色譜柱分離,紫外檢測器或熒光檢測器檢測,外標法定量。
3 試劑和材料
除非另有說明,本方法所用試劑均為分析純,水為GB/T6682規定的一級水。
3.1 試劑
3.1.1 無水乙醇(C2H5OH):經檢查不含醛類物質,檢查方法參見A.1
3.1.2 抗壞血酸(C6H3O)
3.1.3 氫氧化鉀(KOH)。
3.1.4 乙醚[(CH3CH2)2O]:經檢查不含過氧化物,檢查方法參見A.2
3.1.5 石油醚(C5H12O2):沸程為30℃~60℃。
3.1.6 無水硫酸鈉(Na2SO4)
3.1.7 pH試紙(pH范圍1~14)
3.1.8 甲醇(CH3OH):色譜純。
3.1.9 淀粉酶:活力單位≥100U/mg
3.1.10 2,6-二叔丁基對甲酚(CH2O):簡稱BHT。
3.2 試劑配制
3.2.1 氫氧化鉀溶液(50g/100g):稱取50g氫氧化鉀,加入50mL水溶解,冷卻后,儲存于聚乙烯瓶中。
3.2.2 石油醚-乙醚溶液(1+1):量取200mL石油醚,加入200mL乙醚,混勻
3.2.3 有機系過濾頭(孔徑為0.22m)
3.3 標準品
3.3.1 維生素A標準品 視黃醇(C20H3O,CAS號:68-26-8):純度≥95%,或經國家認證并授予標準物質證書的標準物質
3.3.2 維生素E標準品
3.3.2.1 α生育酚(Ca3HO2,CAS號:10191-41-0):純度≥95%,或經國家認證并授予標準物質證書的標準物質。
3.3.2.2 β生育酚(C23H8O2,CAS號:148-03-8):純度≥95%,或經國家認證并授予標準物質證書的標準物質。
3.3.2.3 γ-生育酚(C2H3O2,CAS號:54-28-4):純度≥95%,或經國家認證并授予標準物質證書的標準物質。
3.32.4 δ生育酚(C27H46O2,CAS號:119-13-1):純度≥95%,或經國家認證并授予標準物質證書的標準物質。
3.4 標準溶液配制
3.4.1 維生素Δ標準儲備溶液(0.500mg/mL):準確稱取25.0mg維生素A標準品,用無水乙醇溶解后,轉移入50mL容量瓶中,定容至刻度,此溶液濃度約為0.500mg/mL。將溶液轉移至棕色試劑瓶中,密封后,在一20℃下避光保存,有效期1個月。臨用前將溶液回溫至20℃,并進行濃度校正(校正方法參見附錄B)
3.4.2 維生素E標準儲備溶液(1.00mg/mL):分別準確稱取a生育酚、B生育酚、y生育酚和生育酚各50.0mg,用無水乙醇溶解后,轉移亼50mL容量瓶中,定容至刻度,此溶液濃度約為1.00mg/mL。將溶液轉移至棕色試劑瓶中,密封后,在-20℃下避光保存,有效期6個月。臨用前將溶液冋溫至20℃,并進行濃度校正(校正方法參見附錄B)。
3.4.3 維生素A和維生素E混合標準溶液中間液:準確吸取維生素A標準儲備溶液1.00m和維生素E標準儲備溶液各5.00mL于同一50mL容量瓶中,用甲醇定容至刻度,此溶液中維生素A濃度為10.0g/mL,維生素E各生育酚濃度為100μg/mL。在-20℃下避光保存,有效期半個月
3.4.4 維生素A和維生素E標準系列工作溶液:分別準確吸取維生素A和維生素E混合標準溶液中間液0.20mL、0.50mL、1.00mL、2.00mL、4.00mL、6.00mL于10mL棕色容量瓶中,用甲醇定容至刻度,該標準系列中維生素A濃度為0.20μg/mL、0.50μg/m、1.00μg/mL、2.00μg/mL、4.00μg/mL、6.00μg/mL,維生素E濃度為2.00μg/m、5.00μg/mL、10.0μg/mL、20.0μg/mL、40.0μg/mL、60.0μg/mL。臨用前配制。
4 儀器和設備
4.1 分析天平:感量為0.01mg
4.2 恒溫水浴振蕩器
4.3 旋轉蒸發儀。
4.4 氮吹儀
4.5 紫外分光光度計。
4.6 分液漏斗萃取凈化振蕩器
4.7 高效液相色譜儀:帶紫外檢測器或二*管陣列檢測器或熒光檢測器。
5 分析步驟
5.1 試樣制備
將一定數量的樣品按要求經過縮分、粉碎均質后,儲存于樣品瓶中,避光冷藏,盡快測定
5.2 試樣處理
警示:使用的所有器皿不得含有氧化性物質;分液漏斗活塞玻璃表面不得涂油;處理過程應避免紫外光照,盡可能避光操作;提取過程應在通風柜中操作
5.2.1 皂化
5.2.1.1 不含淀粉樣品
稱取2g~5g(精確至0.01g)經均質處理的固體試樣或50g(精確至0.01g)液體試樣于150mL平底燒瓶中,固體試樣需加入約20mL溫水,混勻,再加入1.0g抗壞血酸和0.1gBHT,混勻,加入30mL無水乙醇,加廴10mL~20mL氫氧化鉀溶液,邊加邊振搖,混勻后于80℃恒溫水浴震蕩皂化30min,皂化后立即用冷水冷卻至室溫
注:皂化時間一般為30min,如皂化液冷卻后,液面有浮油,需要加人適量氫氧化鉀溶液,并適當延長皂化時間。
5.2.1.2 含淀粉樣品
稱取2g~5g(精確至0.01g)經均質處理的固體試樣或50g(精確至0.01g)液體樣品于150mL平底燒瓶中,固體試樣需用約20mL溫水混勻,加入0.5g~1g淀粉酶,放入60℃水浴避光恒溫振蕩30min后,取出,向酶解液中加入1.0g抗壞血酸和0.1gBHT,混勻,加入30mL無水乙醇,10mL
20mL氫氧化鉀溶液,邊加邊振搖,混勻后于80℃恒溫水浴振蕩皂化30min,皂化后立即用冷水冷卻至室溫。
5.2.2 提取
將皂化液用30mL水轉入250mL的分液漏斗中,加入50mL石油醚-乙醚混合液,振蕩萃取5min,將下層溶液轉移至另一250mL的分液漏斗中,加入50mL的混合醚液再次萃取,合并醚層。
注:如只測維生素A與α-生育酚,可用石油醚作提取劑。
5.2.3 洗滌
用約100mL水洗滌醚層,約需重復3次,直至將醚層洗至中性(可用pH試紙檢測下層溶液pH值),去除下層水相。
5.24 濃縮
將洗滌后的醚層經無水硫酸鈉(約3g)濾250mL旋轉蒸發瓶或氮氣濃縮管中,用約15mL石油瞇沖洗分液漏斗及無水硫酸鈉2次,并入蒸發瓶內,并將其接在旋轉蒸發儀或氣體濃縮儀上,于40℃水浴中減壓蒸餾或氣流濃縮,待瓶中醚液剩下約2mL時,取下蒸發瓶,立即用氮氣吹至近干。用甲醇分次將蒸發瓶中殘留物溶解并轉移至10mL容量瓶中,定容至刻度。溶液過0.22μm有機系濾膜后供高效液相色譜測定
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